# 마이크로톰(microtome)을 이용한 박절 시 절편 두께로 가장 적합한 것은?

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> language: ko  
> subject: 조직 처리 — 포매·박절

## 문제

마이크로톰(microtome)을 이용한 박절 시 절편 두께로 가장 적합한 것은?

## 보기

1. 20~25 μm
2. 30~40 μm
3. 4~6 μm **✔ 정답**
4. 1~2 μm
5. 10~15 μm

**정답: 3**

## 해설

일반적인 헤마톡실린-에오신(H&E) 염색을 위한 파라핀 포매 절편의 표준 두께는 4~6 μm이다. 1~2 μm는 전자현미경용 초박절편, 10 μm 이상은 동결절편이나 특수 목적에 사용된다.

## 심화 해설

핵심 해설
이 문제는 조직병리학에서 가장 기본이 되는 파라핀 포매 조직의 표준 절편 두께를 묻는 문제예요. 마이크로톰(Microtome)을 이용한 박절(Sectioning)에서 절편 두께는 검사 목적과 염색법에 따라 결정됩니다.

1.  **핵심 개념 분석 (Key Concept)**: 일반적인 헤마톡실린-에오신(Hematoxylin and Eosin, H&E) 염색을 위한 파라핀 포매(paraffin embedding) 조직의 표준 절편 두께는 4~6 μm (마이크로미터)입니다. 이 두께는 광학현미경으로 세포 핵과 세포질의 세부 구조를 관찰하기에 가장 적합한 두께로, 염색액이 고르게 투과되고 세포가 겹쳐 보이지 않아 정확한 병리 진단이 가능합니다.
2.  **정답 근거 (Answer Rationale)**: 핵심! ③번 **4~6 μm**는 조직병리검사실에서 일상적으로 사용되는 파라핀 절편의 표준 규격입니다. 이는 국제적인 표준작업지침서(SOP)에서 권장하는 두께이며, 대부분의 자동 염색장비와 수동 염색 프로토콜이 이 두께를 기준으로 최적화되어 있습니다.
3.  **오답 분석 (Distractor Analysis)**:
- ①번 **20~25 μm**: 혼동 주의! 너무 두꺼워서 세포가 여러 겹으로 겹쳐 보이고 염색액이 깊이 침투하지 못해 핵과 세포질의 세부 구조를 관찰하기 어렵습니다. 동결절편이나 특수 염색(예: 지방 염색) 시 일부 사용되기도 하지만 일반 H&E 염색에는 적합하지 않습니다.
- ②번 **30~40 μm**: 절편이 너무 두꺼워 광학현미경으로 관찰이 거의 불가능합니다. 조직 블록을 다듬거나(trimming) 특수 목적(예: 전체 장기 관찰)에 극히 제한적으로 사용됩니다.
- ④번 **1~2 μm**: 혼동 주의! 이 두께는 전자현미경(Electron Microscopy, EM) 관찰을 위한 초박절편(ultrathin section)에 사용됩니다. 일반 광학현미경용 파라핀 절편에는 너무 얇아서 조직이 찢어지거나 주름이 생기기 쉽습니다.
- ⑤번 **10~15 μm**: 동결절편(frozen section)이나 특수 염색(예: 신경 섬유 염색, 일부 면역조직화학염색)에서 사용될 수 있으나, 표준 H&E 염색 기준으로는 너무 두꺼운 편입니다.
4.  **연관 개념 정리 (Related Concepts)**: 절편 두께는 포매 방법(파라핀, 동결, 레진)에 따라 달라집니다. 파라핀 절편(4~6 μm), 동결절편(8~10 μm), 레진 절편(1~2 μm, 전자현미경용)으로 구분하여 암기해두세요. 또한, 마이크로톰의 종류(회전식, 슬라이딩식, 초박절편기)와도 연결 지어 이해하면 좋습니다.

개념 정리: 포매 방법별 표준 절편 두께

| 포매 방법 | 표준 절편 두께 | 주요 용도 |
| --- | --- | --- |
| 파라핀 포매 (Paraffin Embedding) | 4~6 μm | 일상적인 H&E 염색, 면역조직화학염색(IHC), 특수염색 |
| 동결절편 (Frozen Section) | 8~10 μm | 수술 중 신속 진단, 지방 조직 염색 |
| 레진 포매 (Resin Embedding) | 1~2 μm (초박절편) | 전자현미경 관찰, 광학현미경용 반박절편(semithin section, 0.5~1 μm) |

한눈에 비교!:
- **파라핀 절편 (4~6 μm)** vs **동결절편 (8~10 μm)**: 동결절편이 더 두꺼운 이유는 신속한 제작을 위해 지지체(파라핀) 없이 조직 자체의 강도만으로 박절하기 때문이며, 염색 시 세포 밀도가 높아 보일 수 있습니다.
- **파라핀 절편 (4~6 μm)** vs **레진 절편 (1~2 μm)**: 레진 절편은 훨씬 얇고 단단하여 미세 구조 관찰에 유리하지만, 제작 시간이 오래 걸리고 염색 프로토콜이 다릅니다.

핵심 검사 포인트: 박절 시 절편 두께가 일정하지 않으면 염색이 고르지 않거나 조직이 찢어질 수 있습니다. 마이크로톰 사용 전 반드시 **칼날 상태**와 **조직 블록의 경도**를 확인하고, 표준작업지침서(SOP)에 명시된 두께로 설정해야 합니다. 두께가 너무 얇으면 조직이 말리거나 파손되고, 너무 두꺼우면 염색이 진하게 되어 핵-세포질 구분이 어려워집니다.

암기 팁: "파라핀은 4~6, 동결은 8~10, 전자는 1~2"로 숫자만 외워두세요. '파라핀 = 4~6 μm'는 조직병리학의 가장 기본적인 숫자입니다. '4~6'은 '사~육'으로 기억하고, '일반 H&E = 4~6'이라고 연결 지으세요.

국시 빈출 포인트: 파라핀 절편의 표준 두께(4~6 μm)는 거의 매년 출제되는 기본 개념입니다. 단순 숫자 암기보다는, 각 두께가 사용되는 검사법(H&E, 전자현미경, 동결절편)과 연결 지어 출제됩니다.

기출 변형 주의!: "다음 중 동결절편의 적절한 두께는?" 또는 "전자현미경용 초박절편기(ultramicrotome)로 만든 절편의 두께로 옳은 것은?"과 같이 변형되어 출제될 수 있습니다. 각각 8~10 μm, 60~100 nm(또는 1~2 μm의 반박절편과 혼동)임을 함께 암기하세요.

## 임상 시나리오

검사실 실무 가이드

- **검사실 시나리오 (Laboratory Scenario)**: 병리과에 위내시경 생검 조직이 접수되었습니다. 조직은 파라핀 블록으로 포매되었고, 임상병리사(조직병리사)는 마이크로톰으로 박절을 시작하려 합니다. SOP에 따라 절편 두께를 4~6 μm로 설정하고, 블록을 얼음판에 식힌 후 박절을 시작합니다.
- **검사 수행 및 결과 보고 전략 (Testing & Reporting)**: 먼저 블록을 트리밍(trimming)하여 조직 표면을 노출시킵니다(이때는 10~20 μm 정도의 두꺼운 두께로 시작). 조직이 완전히 노출되면 두께를 4~6 μm로 조정하고, 연속 절편(section ribbon)을 만들어 45℃ 수조에 펼친 후, 실레인(silane) 또는 폴리-L-라이신(poly-L-lysine) 코팅 슬라이드에 부착합니다. 이후 60℃ 오븐에서 건조 후 H&E 염색 또는 면역조직화학염색(IHC)을 진행합니다.
- **검체 안전 및 주의사항 (Precautions)**: 포르말린 고정 및 파라핀 포매 과정에서도 감염성 병원체가 완전히 불활성화되지 않을 수 있습니다. 마이크로톰 사용 시 칼날에 베이지 않도록 주의하고, 발생하는 파라핀 부스러기(paraffin waste)는 감염성 폐기물로 간주하여 지정된 용기에 폐기해야 합니다.

검사실 표준작업절차:
1. 마이크로톰 청소 및 칼날 장착 상태 확인
2. 파라핀 블록을 마이크로톰 척(chuck)에 고정
3. 블록 트리밍 (10~20 μm 두께로 조직 노출)
4. 절편 두께를 4~6 μm로 설정
5. 연속 절편 ribbon 제작
6. 45℃ 수조에서 절편 펼치기 (조직 주름 제거)
7. 코팅 슬라이드에 부착
8. 60℃ 건조 오븐에서 30분~1시간 건조

선배 임상병리사의 한마디: "임상병리사는 단순히 조직을 자르고 염색하는 사람이 아니라, 환자의 병변을 정확히 진단할 수 있는 최적의 검체를 제공하는 전문가예요! 절편 두께 하나만 잘못 맞춰도 염색이 망가지고 진단이 지연될 수 있다는 점을 꼭 기억하세요. 국시에서도 이 기본이 가장 중요하게 나옵니다."

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